Connaissance Quel est le but de l'utilisation d'éthanol à 70 % pour l'échantillonnage de Varroa destructor ? Assurer une précision maximale dans la détection des acariens
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Équipe technique · HonestBee

Mis à jour il y a 3 jours

Quel est le but de l'utilisation d'éthanol à 70 % pour l'échantillonnage de Varroa destructor ? Assurer une précision maximale dans la détection des acariens


L'utilisation d'éthanol à 70 % dans l'échantillonnage de Varroa destructor remplit une double fonction essentielle : fixation biologique immédiate et prétraitement chimique pour la séparation. Il euthanasie instantanément les abeilles et les acariens pour préserver l'état de l'échantillon, tout en agissant simultanément comme un solvant pour affaiblir la liaison physique entre le parasite et l'hôte afin d'obtenir un comptage précis.

Point clé L'éthanol à 70 % n'est pas seulement un conservateur ; c'est un agent chimique actif qui perturbe l'adhérence des tarses des acariens. Cela garantit que lorsque l'échantillon est agité, les acariens se détachent efficacement, évitant ainsi les faux négatifs et assurant une évaluation précise des taux d'infestation.

Le double rôle de l'éthanol : fixation et prétraitement

Fixation biologique immédiate

La fonction principale de la solution d'éthanol est de « fixer » l'état de l'échantillon au moment de sa collecte.

Au contact, l'alcool tue immédiatement les abeilles et les acariens présents sur leur corps. Cela empêche les acariens de migrer ou de s'échapper, garantissant que l'échantillon reflète le niveau d'infestation exact au moment de la collecte.

Prévention de la décomposition de l'échantillon

Au-delà de la fixation immédiate, l'alcool agit comme un conservateur.

Ceci est essentiel si les échantillons doivent être transportés ou stockés avant analyse. L'éthanol empêche la décomposition biologique des abeilles, maintenant l'intégrité structurelle de l'échantillon jusqu'à ce qu'il atteigne le laboratoire.

Mécanisme de détachement des acariens

Affaiblissement de l'adhérence des tarses

L'avantage le plus technique de l'utilisation de l'éthanol est son action physico-chimique sur les acariens.

Les acariens Varroa s'accrochent aux abeilles à l'aide de coussinets tarsaux spécialisés. La solution d'éthanol affaiblit chimiquement l'adhérence entre ces coussinets et la surface du corps de l'abeille, desserrant ainsi efficacement la prise du parasite.

Réduction de la tension superficielle

L'éthanol modifie la dynamique des fluides dans le récipient de collecte.

En réduisant la tension superficielle du liquide, la solution permet une meilleure pénétration entre l'abeille et l'acarien. Combiné à une agitation mécanique (secouage), cela garantit que les acariens sont physiquement séparés des abeilles plutôt que de rester piégés dans des bulles d'air ou de rester attachés en raison de la friction.

Maximisation de l'efficacité d'élution

Le but ultime de l'utilisation de l'éthanol est d'augmenter « l'efficacité d'élution » – le taux auquel les acariens sont lavés avec succès des abeilles.

Étant donné que l'adhérence est chimiquement affaiblie, le processus d'agitation subséquent devient beaucoup plus efficace. Cela garantit que le comptage final inclut les acariens qui, autrement, seraient restés cachés ou attachés, fournissant un taux d'infestation statistiquement précis.

Considérations opérationnelles et compromis

La nécessité de l'agitation

Bien que l'éthanol affaiblisse la liaison, il ne retire pas passivement tous les acariens à lui seul.

Une agitation mécanique active (secouer le récipient) est toujours nécessaire pour déloger les acariens. Se fier uniquement au trempage sans agitation entraînera des comptages bas inexacts.

Échantillonnage destructeur

Cette méthode est létale pour l'ensemble d'abeilles échantillonné.

Contrairement aux méthodes de « roulement au sucre » qui peuvent permettre aux abeilles de survivre, le lavage à l'éthanol est un test destructeur. Il sacrifie un petit nombre d'ouvrières pour obtenir une image très précise de la santé de la colonie.

Vérification visuelle

L'utilisation de récipients en plastique transparent est un choix stratégique soutenant le processus chimique.

La transparence permet aux chercheurs de vérifier visuellement que le niveau d'éthanol est suffisant pour couvrir les abeilles et que les échantillons restent intacts pendant le transport, sans avoir besoin de briser le sceau et de risquer une contamination.

Faire le bon choix pour votre objectif

Lors de la conception de votre protocole d'échantillonnage, tenez compte de vos priorités en matière de précision par rapport à la préservation de la colonie.

  • Si votre objectif principal est une précision maximale : Utilisez la méthode de lavage à l'éthanol à 70 %, car elle garantit chimiquement le taux de détachement des acariens le plus élevé et élimine la migration.
  • Si votre objectif principal est la préservation de la colonie : Envisagez des méthodes non létales comme le roulement au sucre, en acceptant que le comptage puisse être légèrement moins précis qu'un lavage chimique.
  • Si votre objectif principal est l'analyse différée : Fiez-vous à la méthode à l'éthanol, car ses qualités conservatrices vous permettent de collecter des échantillons en lots sur le terrain pour un comptage ultérieur en laboratoire.

En combinant la fixation chimique avec la séparation mécanique, le lavage à l'éthanol reste la référence absolue pour une quantification fiable de l'infestation par Varroa.

Tableau récapitulatif :

Caractéristique Fonction dans l'échantillonnage de Varroa Impact sur les résultats
Fixation biologique Euthanasie immédiate des abeilles et des acariens Empêche la migration et l'évasion des acariens
Conservation Inhibe la décomposition biologique Permet le stockage et le transport à long terme
Solvant chimique Affaiblit l'adhérence des coussinets tarsaux des acariens Assure le détachement facile des acariens de l'hôte
Tension superficielle Abaisse la tension superficielle du liquide Améliore l'efficacité d'élution lors de l'agitation
Clarté visuelle Utilisé dans des récipients transparents Permet la vérification de l'intégrité de l'échantillon

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Références

  1. Fábio de Assis Pinto, Lídia Maria Ruv Carelli Barreto. Infestation rate of the mite Varroa destructor in commercial apiaries of the Vale do Paraíba and Serra da Mantiqueira, southeastern Brazil. DOI: 10.1590/1678-7264

Cet article est également basé sur des informations techniques de HonestBee Base de Connaissances .

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