Connaissance Pourquoi les flacons d'échantillonnage en plastique à haute étanchéité et les conservateurs à l'éthanol sont-ils nécessaires pour l'échantillonnage à grande échelle des abeilles ?
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Équipe technique · HonestBee

Mis à jour il y a 3 jours

Pourquoi les flacons d'échantillonnage en plastique à haute étanchéité et les conservateurs à l'éthanol sont-ils nécessaires pour l'échantillonnage à grande échelle des abeilles ?


Les flacons en plastique à haute étanchéité et les conservateurs à l'éthanol sont essentiels pour l'échantillonnage sur le terrain car ils arrêtent immédiatement l'activité biologique et sécurisent physiquement l'échantillon pendant le transport. En utilisant une solution d'éthanol à 96 % dans un récipient étanche, les chercheurs empêchent la décomposition des tissus, garantissant ainsi que les spores de Nosema conservent leur intégrité structurelle pour une quantification précise en laboratoire.

Les données de terrain ne sont fiables que dans la mesure où l'état physique des spécimens à leur arrivée. La combinaison d'une fermeture hermétique et d'une conservation chimique de haute qualité est la seule méthode efficace pour inhiber la dégradation, garantissant que les résultats de laboratoire reflètent les véritables niveaux d'infection au moment de la collecte.

Préservation de l'intégrité biologique sur le terrain

Fixation immédiate des tissus

Au moment où une abeille est collectée, la décomposition biologique commence. L'introduction d'éthanol agit comme un fixateur immédiat, arrêtant les processus physiologiques et tuant efficacement le spécimen sur le site de collecte.

Cette fixation rapide est essentielle pour l'échantillonnage à grande échelle. Elle empêche la dégradation naturelle de l'abdomen de l'abeille, qui est le site principal de l'infection par Nosema.

Inhibition de la croissance bactérienne

Sans conservateur, la croissance bactérienne et l'activité enzymatique détruiraient l'échantillon. L'éthanol crée un environnement qui inhibe la dégradation biologique, garantissant la stabilité de l'échantillon dans le temps.

Cette protection est valable pendant plusieurs semaines, ce qui laisse amplement le temps de transporter les échantillons depuis des ruchers éloignés jusqu'au laboratoire sans perte de données.

Maintien de la structure des spores

Pour Nosema spécifiquement, l'intégrité de la spore est primordiale. La référence principale souligne que l'éthanol à 96 % assure l'intégrité structurelle des spores.

Si le tissu de l'abeille se dégrade, les spores peuvent devenir difficiles à identifier ou à compter. Des spores intactes sont nécessaires pour l'analyse microscopique quantitative utilisée pour déterminer la gravité de l'infection.

Assurer l'exactitude des données pendant le transport

Le rôle des flacons à haute étanchéité

L'efficacité de l'éthanol dépend entièrement de sa capacité à rester dans le récipient. Des flacons en plastique à haute étanchéité sont nécessaires pour empêcher l'évaporation ou la fuite de la solution d'éthanol volatile.

Si le sceau échoue, la concentration d'éthanol diminue ou disparaît complètement. Cela relancerait le processus de décomposition, rendant l'échantillon inutile avant qu'il n'atteigne le laboratoire.

Garantir la validité quantitative

L'objectif ultime de l'échantillonnage sur le terrain est l'obtention de données précises. L'utilisation de flacons robustes et de conservateurs garantit l'exactitude des analyses ultérieures, qu'il s'agisse de détection moléculaire ou de comptage microscopique.

En éliminant la variable de dégradation de l'échantillon, les chercheurs peuvent être convaincus que les comptages de spores observés en laboratoire sont des représentations fidèles des conditions sur le terrain.

Comprendre les compromis

Sensibilité de la concentration d'éthanol

Bien que la référence principale recommande l'éthanol à 96 % pour une fixation et une préservation structurelle optimales, il convient de noter que des concentrations plus faibles (comme 75 %) sont parfois utilisées pour la préservation générale.

Cependant, le recours à des concentrations plus faibles peut être moins efficace pour une fixation rapide et profonde des tissus dans les opérations à grande échelle. S'en tenir à des concentrations plus élevées (96 %) offre la plus grande assurance de stabilité structurelle pour les spores de Nosema.

Dépendance à la manipulation physique

Même le meilleur flacon à haute étanchéité peut échouer s'il n'est pas correctement fermé. La désignation "haute étanchéité" fait référence à la capacité du flacon, mais l'erreur de l'opérateur reste un risque.

Dans le cadre d'un échantillonnage à grande échelle, un seul bouchon mal fermé peut compromettre un ensemble de données entier. Des vérifications rigoureuses des sceaux des flacons sont aussi importantes que l'éthanol lui-même.

Faire le bon choix pour votre objectif

Une quantification fiable de Nosema nécessite un protocole qui donne la priorité à la stabilité de l'échantillon avant tout.

  • Si votre objectif principal est la précision microscopique quantitative : Privilégiez l'utilisation d'éthanol à 96 % pour assurer une intégrité structurelle maximale des spores pour le comptage.
  • Si votre objectif principal est le transport de longue durée : Assurez-vous que vos flacons en plastique sont classés comme à haute étanchéité pour éviter l'évaporation du conservateur sur plusieurs semaines.

Le succès en laboratoire dépend de la qualité de la préservation sur le terrain.

Tableau récapitulatif :

Caractéristique Spécification Rôle dans l'échantillonnage de Nosema
Conservateur Éthanol à 96 % Arrête la décomposition et maintient l'intégrité structurelle des spores.
Type de récipient Plastique à haute étanchéité Empêche l'évaporation et la fuite des conservateurs volatils.
Vitesse de fixation Immédiate Arrête l'activité biologique au point de collecte.
Durée de stabilité Plusieurs semaines Permet le transport longue distance depuis des ruchers éloignés.
Objectif principal Précision quantitative Garantit que les comptages de laboratoire reflètent les niveaux d'infection réels sur le terrain.

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Références

  1. Micaela Ceccotti, Agostina Giacobino. Dinámica estacional de Varroa destructor y Nosema sp en colonias de Apis mellifera en clima templado de Argentina. DOI: 10.30972/vet.3315889

Cet article est également basé sur des informations techniques de HonestBee Base de Connaissances .

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