Connaissance Pourquoi utilise-t-on de l'éthanol de haute pureté et des tensioactifs pour la détection des acariens ? Maximiser la précision de Varroa et la préservation de l'ADN
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Équipe technique · HonestBee

Mis à jour il y a 3 jours

Pourquoi utilise-t-on de l'éthanol de haute pureté et des tensioactifs pour la détection des acariens ? Maximiser la précision de Varroa et la préservation de l'ADN


L'éthanol de haute pureté et les tensioactifs servent d'agents chimiques essentiels pour maximiser la précision de la détection des acariens Varroa. L'éthanol agit comme un solvant pour dissoudre les adhésifs cireux qui permettent aux acariens de s'accrocher aux abeilles mellifères, tout en préservant simultanément les tissus biologiques. Les tensioactifs sont introduits pour réduire la tension superficielle, garantissant que les acariens sont physiquement séparés de l'hôte et peuvent être filtrés pour un comptage précis.

Point essentiel à retenir La combinaison de ces produits chimiques résout le double défi de la détection et de la préservation. L'éthanol détache chimiquement les acariens des abeilles et stabilise l'ADN pour l'analyse en laboratoire, tandis que les tensioactifs garantissent mécaniquement que ces acariens se détachent librement pour un dénombrement précis de la population.

La mécanique du détachement des acariens

Dissolution des adhésifs cireux

Les abeilles mellifères et les acariens Varroa partagent une connexion physique facilitée par des substances cireuses ou adhésives sur la cuticule de l'abeille. L'éthanol agit comme un agent de décapage chimique dans cet environnement.

En dissolvant ces couches cireuses, l'éthanol affaiblit la prise physique de l'acarien sur l'abeille. Cela transforme une fixation biologique en une association lâche, permettant aux acariens de se détacher en douceur pendant le processus d'agitation ou de secouage.

Réduction de la tension superficielle

Même après que les acariens aient été chimiquement détachés, les forces physiques peuvent les maintenir piégés parmi les poils de l'abeille ou flottant à la surface du liquide. C'est là que les tensioactifs (détergents spécialisés) jouent un rôle crucial.

Les tensioactifs réduisent considérablement la tension superficielle de la solution. Cela empêche les acariens d'adhérer aux abeilles ou aux parois du récipient, garantissant qu'ils se détachent complètement et traversent les tamis de filtration pour être quantifiés.

Préservation de l'intégrité biologique

Fixation rapide des tissus

Au-delà du simple détachement, l'éthanol de haute pureté (généralement 70 % à 75 %) agit comme un fixateur puissant. Au contact, il pénètre rapidement les tissus des abeilles mellifères et des acariens.

Cette pénétration rapide inhibe l'activité enzymatique qui, autrement, entraînerait la décomposition. Elle garantit l'intégrité morphologique du spécimen, en maintenant la structure physique intacte pour l'inspection visuelle.

Protection de l'information génétique

Pour des diagnostics avancés, les comptages visuels ne suffisent pas. L'éthanol de haute pureté empêche la dégradation de l'ADN en arrêtant la biodégradation et la croissance microbienne.

Cela permet de transporter les échantillons de l'apiary à un laboratoire pendant plusieurs jours sans perdre de données génétiques. Ceci est essentiel pour les expériences moléculaires, telles que l'identification de souches virales spécifiques ou de génotypes d'acariens.

Comprendre les compromis

Sensibilité à la concentration

L'efficacité de la solution dépend fortement de sa concentration. Bien qu'une solution à 50 % soit adéquate pour dissoudre la cire et le lavage de base, des concentrations plus élevées (70-75 %) sont nécessaires pour la préservation de l'ADN.

L'utilisation d'une concentration trop faible peut détacher les acariens mais ne pas arrêter la dégradation enzymatique, rendant l'échantillon inutile pour l'analyse moléculaire.

Risques d'évaporation

L'éthanol est un solvant volatil. Si les flacons d'échantillons ne sont pas chimiquement stables ou correctement scellés, le solvant s'évaporera pendant le transport.

L'évaporation modifie la concentration du conservateur, ce qui peut entraîner la détérioration de l'échantillon ou des dommages à l'ADN avant que l'échantillon n'atteigne le laboratoire.

Faire le bon choix pour votre objectif

Pour garantir que vos échantillonnages fournissent des données exploitables pour la gestion de la santé des colonies, appliquez les produits chimiques en fonction de votre objectif spécifique :

  • Si votre objectif principal est le comptage immédiat sur le terrain : Privilégiez l'ajout de tensioactifs à votre solution pour garantir que 100 % des acariens se détachent pour un comptage visuel précis.
  • Si votre objectif principal est l'analyse d'ADN en laboratoire : Assurez-vous d'utiliser de l'éthanol de haute pureté à 75 % et un récipient hermétiquement scellé pour préserver les marqueurs génétiques pendant le transport.

En fin de compte, le bon mélange chimique transforme un simple lavage en un outil de diagnostic scientifique rigoureux, prévenant à la fois la sur-médication et les pertes de colonies non traitées.

Tableau récapitulatif :

Agent chimique Fonction principale Avantage clé pour la détection
Éthanol de haute pureté Dissout les adhésifs cireux et fixe les tissus Détache les acariens et stabilise l'ADN pour l'analyse moléculaire
Tensioactifs Réduit la tension superficielle du liquide Garantit que 100 % des acariens se détachent de l'hôte pour un comptage précis
Concentration de 70-75 % Fixation biologique rapide Prévient la décomposition de l'échantillon pendant le transport au laboratoire

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Références

  1. Agostina Giacobino, Marcelo Signorini. Key management practices to prevent high infestation levels of Varroa destructor in honey bee colonies at the beginning of the honey yield season. DOI: 10.1016/j.prevetmed.2016.07.013

Cet article est également basé sur des informations techniques de HonestBee Base de Connaissances .

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